viernes, 26 de junio de 2009

tareas

Pre-analitica:

En realidad se le ha prestado menos atención al establecimiento de las medidas de control de la calidad en las etapas de obtención, procesamiento y almacenamiento de las muestras que al resto del procesamiento analítico.6 En la hemostasia, la etapa preanalítica es una etapa clave, y de ella depende en gran medida el resultado final. Los objetivos de las normas de control de la calidad en la fase preanalítica son:La correcta identificación del paciente, del solicitante y de la prueba solicitada.Reducir al máximo la variabilidad intraindividual de los parámetros a medir.Evitar el deterioro de la muestra mediante los procesos de obtención, manipulación transporte y conservación.
Analitica:
Este paso es clave en la Planificación Estratégica porque nos va a permitir conocer cuáles sonlos principales problemas con los que nos enfrentamos, y a partir de los cuales deberemosbuscar las soluciones específicas. Requiere de un análisis realista, en él se basarán luego lasestrategias con las que se intentará revertir la situación apuntando al logro de los objetivospropuestos.En el análisis de las fortalezas y debilidades se deberán tener en cuenta los recursos humanos,tecnológicos, financieros, físicos y organizacionales. Será necesario analizar cada uno porseparado para determinar en cuáles nos vamos a apoyar. La detección de las debilidadesservirá para elaborar las estrategias de planificación.Se requerirá creatividad a la hora de evaluar los recursos y no agotar las posibilidades en unmismo en el contexto más cercano. Este es uno de los desafíos de la planificación.Los recursos humanos son las personas con las que trabajamos y las potencialidades ydebilidades que ellos y nosotros tenemos en la tarea.Los recursos tecnológicos son aquellos elementos con los que contamos para realizar mejornuestro trabajo. Cuando podemos contar con ellos nos fortalecen, cuando no, significanverdaderos puntos débiles.
Post-analitica:
Es la entrega de los resultados al paciente.

tareas

Mantenimiento preventivo:Consiste en la revisión periódica de ciertos aspectos.Se ocupa en la determinación de condiciones operativas, de durabilidad y de confiabilidad de un equipo, este tipo de mantenimiento nos ayuda a reducir los tiempos que puedan generarse por mantenimiento correctivo.

Mantenimiento correctivo:Corrección de las averías o fallas, cuando estas se prestan, y no planificadamente, al contrario del caso de mantenimiento preventivo.

tareas

-Indirecta:En una tinción indirecta se hace interaccionar en primer lugar a una sustancia química denominada “mordiente” con el sustrato la cual permite la posterior interacción del colorante.2-Directa:En una tinción directa el colorante interacciona directamente con el sustrato.3-Azul de metileno:Es un colorante que se usa para tratar una enfermedad llamada metahemoglobinemia. Se una como tintura para teñir ciertas partes del cuerpo antes o durante la cirugía.También se utiliza como colorante en las tinciones para la observación en el microscopio.4-Tinción de Gram:Es un tipo de tinción diferencial empleada en microbiología para la visualización de bacterias, sobre todo en muestras clínicas.5-Tensión de zhiehl Neelsen:Es una técnica de tinción diferencial rápida y económica para la identificación de microorganismos patógenos, por ejemplo M. tuberculosis.

practica 8 y 9

PRACTICA 9

PRUEBA DE AGLUTINACION

MÉTODO DE PRUEBA RÁPIDA EN PLACA. Ejemplo de técnicaa) Al paciente se le realiza una venopunción, extrayendo la sangre en un tubo sin anticoagulante (Tapón rojo), y es centrifugada por 10 minutos a 3000 revoluciones por minuto. Se separa el suero el cual se utiliza para la determinación de los anticuerpos (puede extraerse con pipetas semiautomáticas).Marcar en una placa de vidrio correctamente indicando el antígeno que se esté usando:(En este caso serian los antígenos):Tífico “O” - Salmonella typhi; Antígeno somático, pH: 6.5 ± 1.0Tífico “H” - Salmonella typhi; Antígeno flagelar, pH: 6.5 ± 1.0NOTA: El reactivo así como los sueros, deben alcanzar la temperatura ambiente para comenzar la prueba.PROCEDIMIENTO:1. Depositar en sitios diferentes de la placa las siguientes cantidades del suero a analizar: 0.08mL, 0.04mL, 0.02mL, 0.01mL y 0.005 mL (EL SUERO DEBE ESTAR TOTALMENTE CLARO).2. Agitar el antígeno a utilizar para tener una suspensión uniforme.3. Añadir 30 mL de la suspensión de antígeno a cada una de las diferentes cantidades de suero. Se recomienda utilizar pipetas automáticas (el gotero incluido proporciona una gota de 30-40 mL).4. Mezclar el antígeno y el suero utilizando un aplicador diferente para cada una de las cantidades de suero.5. Girar la placa manualmente o utilizando un agitador mecánico (120 rpm) durante 2 minutos.6. Realizar la lectura utilizando una fuente de luz directa y observar la aglutinación macroscópica.7. Se recomienda incluir controles Positivo y Negativo.INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOSEl grado de aglutinación se registra como sigue:4+ Aglutinación del 100% de los organismos3+ Aglutinación del 75% de los organismos2+ Aglutinación del 50% de los organismos1+ Aglutinación del 25% de los organismos- Aglutinación del 0% de los organismosLIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO1. Algunos sueros normales pueden dar un titulo de 1:20 a 1:40 y hasta 1:80 pero esto puede ser debido a vacunaciones o alguna infección anterior. No siempre se presenta producción de aglutininas en infecciones bacterianas.2. Se pueden producir reacciones cruzadas de aglutininas debido a vacunaciones para ciertas enfermedades. La vacuna tífica puede producir aglutininas contra antígenos Proteus.3CONCLUSIÓN:El diagnóstico exacto de la enfermedad depende del acercamiento entre el laboratorio clínico y el médico, ya que la elevación del título en la muestra de suero con sintomatología reciente y la muestra de suero en fase convaleciente indicará la exactitud del diagnóstico. El paciente con salmonelosis cursa con un cuadro donde aparecen escalofríos , cefalea, náuseas, anorexia, tos y diarrea o estreñimiento. La fiebre es prolongada y varía de 38,5ºC a 40ºC. Entre un 20-40% presentan dolor abdominal. Se sugiere que se le realice al paciente un coprocultivo (cultivo de las heces fecales). Debe crecer salmonella, identificándose la especia por medio de pruebas bioquímicas.

practica 5


Se denomina frotis a la extensión que se realiza sobre un portaobjetos de una muestra o cultivo con objeto de separar lo más posible los microorganismos, ya que si aparecen agrupados en la preparación es muy difícil obtener una imagen clara y nítida. Este frotis debe ser posteriormente fijado al vidrio del portaobjetos para poder aplicar los métodos habituales de tinción que permiten la observación al microscopio de las bacterias sin que la muestra sea arrastrada en los sucesivos lavados. La fijación de una extensión bacteriana hace que las bacterias queden inactivadas y adheridas al vidrio alterando lo menos posible la morfología y bacteriana y las posibles agrupaciones de células que pudiera haber.Colocar una pequeña gota de agua en el centro de un portaobjetos limpio. Es necesaria muy poca cantidad de agua, por lo que se puede usar el asa de siembra, ya que en el extremo curvo de su filamento queda retenida una mínima gota de agua, que resulta suficiente.Flamear el asa de siembra, tomar, en condiciones asépticas, una pequeña cantidad del cultivo bacteriano en medio sólido y transferirlo a la gota de agua. Remover la mezcla con el asa de siembra hasta formar una suspensión homogénea que quede bastante extendida para facilitar su secado.Si la muestra se toma de un cultivo en medio líquido, no es necesario realizar los dos primeros pasos ya que basta con colocar y extender una gota de la suspensión bacteriana, que se toma con el asa de siembra, directamente sobre el portaobjetos.Esperar hasta que el líquido se evapore o acelerar su evaporación acercando el porta a la llama del mechero. En este caso hay que tener mucha precaución de no calentar demasiado el porta pues las células pueden deformarse

miércoles, 24 de junio de 2009

practica 7

PRACTICA 7Observacion microscopicaLa laminilla ya preparada y lista se monta en el microscopio se aseguraCon las pinsas de la platina y se observa a 100 x donde encontramos bacterias en binas esfericas en formas de baston y que ambas las podemos encontrar de 1 hasta 4 piezas desde separadas y juntas, en cadena.

practica 6

pactica 4

Practica #4Observacion macroscopicaMesa 42lv(m)28/05/091-Nombre del medio: agar salmonella y shiga.Nombre de la siembra: siembra de sigsneNombre de la muestra: sangre sentrifugadaObservaciones:en este medio no a habido resultados de colonias mas queVapor de agua .28/05/09.1:56pm2- Nombre del medio: agar verde brillanteNombre de la siembra: siembra por dispersiónNombre de la muestra: orina (no centrifugada)Observacuiones: no hubo resultados solo las marcas de la siembra. 28/05/09. 2:02pm3- Nombre del medio: agar de hierro de kliglerNombre de la siembra: siembra de tapisNombre de la muestra: h2o de lechugaObservaciones: en esta caja hubo crecimiento de ongos de la lechuga. 28/05/09. 2:08pm
4- Nombre del medio: agar de mac conkeyNombre de la siembra: siembra exagonal.Nombre de la muestra: muestra interdentalObservación: en esta muestra hay pequenos puntitos de caries.28/05/09. 2:9pm5- Nombre del medio: agar dextosaNombre de la siembra: siembra por estriasNombre de la muestra: raspado de piesObservación: vapor de h2o y pequenas manchitas

3 parcial practica 3

cembrado del medioPrimero sacamos 2 mecheros y los colocamos en el campo de esterilizaciónPara inclinar las cajas petris y comenzar a poner las muestras que son las siguientes:OrinaSangreH2o de lechugaRaspado de pieMuestra interdentalYa teniendo estas muestras, las colocamos en el medio de cultivo y empezamos abrirlas para colocar las muestras en cada caja petri.Materiales:-5 o 7 cajas petri de medio de cultivo.-Asa bacteriologica-Vaso de precipitado con 25ml. de agua destilada.-2 mecheros de bunsen-Papel para mesa de laboratorio-Tape-Algodon secoAlgodones con alcohol-Tubo conico de plasticoMuestras para siembras:-Saliva-Muestra interdental-Orina-Agua preparada-Verduras-Muestra de sangreTecnica de extraccion sanguinea:Materiales:-Jeringa 5ml.-Torundas de algodon alcoholosadas-TorniqueteSe realiza asepxia y antisepxia del pliegue del brazo utilizando una torunda de algodon con alcohol.Una vez realizado se debe asegurar la aguja a la jeringadandole un pequeño giro hasta que quede apretado. Una vez lista la jeringa y limpia la zona del pliegue se aplica el torniquete en la parte media del brazo para hacer precion t obtener una vaso dilatacion del conducto sanguineo, se intruduce la jeringa y se extraen 2.5ml. de sangre la que depositaremos en un tubo con tapon rojo sin anticuagulante.No se retita el tapon del tubo se introduce la aguja en el.Se deja coagular la sangre y se toma el tiempo se mete a la centrifuga para separar el paquete del plasma.Una vez separado el paquete del plasma se trasvasa a un tubo de ensaye vacio.Se sembrara el liquido plasmatico en medio de cultivo utilizando la tecnica con varilla de cristal denominada siembra por dispercion.


3 parcial. practica 1y2

practica 1y2Medio de cultivo y esterilizacionPrimero se peso el vidrio de reloj en la balanza granataria despues de eso hicimos los calculos con la regla de 3 para 6 cajas petris, ya teniendo los calculos de las cajasComenzamos a trabajar en el medio de cultivo, comenzamos con hechando el agua destilada en el matraz para medir lo obtenido que eran 114 ml de h2o, ya teniendo el agua Comenzamos a vaciar el polvo de agar de hierro en el matraz de e. comenzamos a revolver el agua con el agar hasta quedar bien batido lo encimamos en el mechero jirandolo varias veces cuidando que no se tirara ya estando listo con el color, lo colocamos en el auto clave para esterilizarlo por 15 min, ya termindo el tiempo lo sacamos del autoclave para dejarlo enfriar, ya tibio comenzamos a esterilizar la boquilla del matraz para hecharlo en las cajas petris, ya estando el liquido en las cajas petris lo dejamos para que se hiciera una tipo gelatina. Después le pusimos el nombre de agar y el # de mesa.